Caspase 3/7检测试剂盒标准操作指南与结果解析
细胞凋亡的精准检测是生命科学研究中的关键环节,而Caspase 3/7的激活是细胞进入不可逆凋亡执行阶段的标志性事件。本指南将详细介绍基于荧光法的Caspase 3/7检测试剂盒的标准操作流程,帮助您获得可靠、可重复的实验数据
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细胞凋亡的精准检测是生命科学研究中的关键环节,而Caspase 3/7的激活是细胞进入不可逆凋亡执行阶段的标志性事件。本指南将详细介绍基于荧光法的Caspase 3/7检测试剂盒的标准操作流程,帮助您获得可靠、可重复的实验数据。
一、实验前的准备与实验设计
成功的检测始于周密的实验规划。
1. 细胞准备与铺板
培养板选择:务必使用白色的96孔或384孔细胞培养板。白色板壁能有效反射和增强微弱的荧光信号,提高检测的灵敏度和信噪比,优于透明的普通培养板。
细胞密度:铺植"合适密度"的细胞至关重要。密度过低,信号太弱无法检测;密度过高,则可能导致细胞接触抑制或营养耗竭,产生非特异性背景。需通过预实验优化,通常在96孔板中,每孔接种5,000 - 50,000个细胞(具体因细胞类型而异)。
2. 关键的实验对照设置
一个设计严谨的对照是数据解读的基石。请务必在板上设置以下对照孔:
阴性对照:只加入等量溶剂(如DMSO)的细胞。此组用于确定本底的、未诱导凋亡的Caspase 3/7活性水平。
空白对照:只含培养基,不含细胞的孔。用于扣除培养基本身可能产生的背景荧光信号。
阳性对照(强烈推荐):使用已知的凋亡诱导剂(如星形孢菌素、Camptothecin等)处理的细胞。此组用于验证您的检测系统和试剂工作正常,并作为信号强度的参考。
二、检测步骤详解
请严格按照以下流程操作,以确保结果的一致性。
步骤1:诱导凋亡与孵育
在细胞贴壁并生长至合适状态后,将您待研究的化合物加入对应的孔中。
轻柔混匀:加样后,通过轻微摇动培养板或使用排枪轻柔吹打(避免产生气泡)以确保化合物均匀分布。
根据您的实验设计,将细胞放回培养箱继续培养特定时间以诱导凋亡。这个时间点需要通过预实验确定。
步骤2:试剂与细胞的平衡
在进行检测前,将Caspase 3/7检测试剂和含有细胞的培养板从培养箱中取出,在室温下平衡20分钟。
重要性:此步骤至关重要。冷试剂直接加入37°C的细胞会导致温度冲击,可能影响酶活性并造成冷凝,影响读数准确性。室温反应能获得更稳定的结果。
步骤3:均质化检测------加入检测试剂
按照推荐体积加入检测试剂:
96孔板:在100 µl培养基中加入50 µl检测试剂。
384孔板:在20 µl培养基中加入10 µl检测试剂。
混匀与孵育:
使用平板振荡器振板2分钟,确保试剂与培养基充分混匀。
随后,将培养板置于暗处,室温孵育30-60分钟。
避光:防止荧光物质淬灭。
时间窗口:荧光信号通常在加入试剂后1小时左右达到峰值。您最早可在30分钟时读板,但为了获得最强信号,建议接近60分钟时检测。请勿超过3小时,因为过长的孵育时间可能导致信号衰减或背景升高。
步骤4:信号读取
使用具有化学发光检测功能的酶标仪。根据试剂盒说明书,设置正确的检测参数(通常无需滤光片,或使用宽波段)。
立即进行读数,确保各孔读数的间隔时间一致,以获得可比性数据。
三、工作原理回顾与数据分析
1. 原理简述
本试剂盒通常采用能穿透细胞膜的荧光底物(如DEVD肽段连接的荧光基团)。当细胞发生凋亡,活化的Caspase 3/7会特异性切割该底物,释放出荧光基团,从而产生荧光信号。荧光强度与Caspase 3/7的活性成正比,即与凋亡细胞的数量和程度正相关。
2. 数据分析
数据导出:将原始荧光数值(RLU)导出至数据分析软件。
背景扣除:将所有孔的读数减去"空白对照"的平均值。
结果计算:
直接比较:比较不同处理组扣除背景后的荧光强度。
标准化:将处理组的信号与"阴性对照组"的均值进行比较,计算相对荧光强度或凋亡诱导倍数(处理组信号/阴性对照组信号)。
统计分析:使用t检验或ANOVA等统计方法,判断实验组与对照组之间是否存在显著差异。
总结
遵循上述标准操作流程,您可以高效、可靠地利用Caspase 3/7检测试剂盒来评估化合物诱导细胞凋亡的效力。严谨的实验设计、规范的操作步骤和合理的数据分析,是揭示细胞生死命运背后分子机制的关键。

Caspases3/7细胞凋亡检测试剂检测化合物Staurosporine(STSP)对HeLa细胞凋亡的作用:4x105/ml 的HeLa细胞接种于96孔白板透明底培养板,100µl/孔。24小时后加入3倍稀释的STSP,37℃5%CO2孵育6hr后按照Caspases3/7细胞凋亡检测试剂的说明进行Caspases3/7活性检测。图1示加入检测试剂后30min-130min读取荧光值的剂量曲线,表格为计算所得的EC50值。

Caspases3/7细胞凋亡检测灵敏度测试:1μMSTSP处理HeLa细胞6hr后,两倍系列稀释的STSP处理的HeLa细胞接种于96孔透明底白板,100µl/孔;细胞浓度为25,000-180cell/well。按照Caspases3/7 细胞凋亡检测试剂的说明进行Caspases3/7活性检测。左图示在检测的40min-70min,荧光信号和细胞凋亡数成线性相关(R2>0.99),可以检测低至200个凋亡细胞。右图示1μMSTSP和溶剂DMSO处理HeLa细胞6hr后进行Caspases3/7活性检测(70min荧光检测数值)。







