Alexa Fluor 647-Labeled SLAMF7/CRACC/CD319 Fc Chimera:免疫治疗靶点的"多光谱精准探针"

Alexa Fluor 647-Labeled SLAMF7/CRACC/CD319 Fc Chimera是一种针对免疫调节关键受体SLAMF7设计的高性能、模块化检测探针。

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Alexa Fluor 647-Labeled SLAMF7/CRACC/CD319 Fc Chimera是一种针对免疫调节关键受体SLAMF7设计的高性能、模块化检测探针。信号淋巴细胞活化分子家族成员7是主要表达于浆细胞、自然杀伤细胞、细胞毒性T细胞及部分B细胞亚群的自身配体受体,在免疫突触形成、淋巴细胞活化与细胞毒性功能调控中起核心作用,尤其作为多发性骨髓瘤的关键表面标志物和治疗靶点而备受关注。该探针通过将SLAMF7胞外域的高特异性识别能力,与远红外荧光染料Alexa Fluor 647的优越光谱特性及Fc片段的通用功能相结合,为免疫细胞分析、血液肿瘤诊断及免疫治疗研究提供了一个高分辨率、高兼容性的多光谱检测平台。

 

一、概述:分子结构与设计逻辑
该蛋白是一种经基因工程重组和化学修饰构建的功能性融合探针,其结构包含三个协同作用的功能模块:
SLAMF7胞外域结合模块
探针的核心是人SLAMF7蛋白的胞外免疫球蛋白样结构域。SLAMF7(又称CRACC或CD319)属于SLAM家族受体,其胞外域包含两个免疫球蛋白样结构域,能够介导同型相互作用。该模块保留了与细胞表面天然SLAMF7受体或可溶性SLAMF7结合的能力,实现对表达该分子的免疫细胞及肿瘤细胞的特异性靶向。
Fc Chimera结构
SLAMF7胞外域与人免疫球蛋白G的Fc片段通过基因融合形成嵌合体。这一设计赋予探针双重优势:
通用检测与信号放大平台:Fc片段为使用任何物种来源、任何标记形式的抗Fc二抗提供了通用结合位点。用户可根据多色实验的通道分配需求,自由选择不同荧光标记的二抗,或将信号转换至其他检测模式。
潜在的功能调节能力:通过抗Fc抗体可实现探针在细胞表面的交联,模拟SLAMF7天然的同型二聚化,可能用于研究受体交联对下游信号(如EAT-2/SAP接头蛋白招募)的调节作用。
Alexa Fluor 647荧光标记
通过共价键将高性能荧光染料Alexa Fluor 647连接到蛋白上。AF647在633 nm或640 nm激光激发下发射远红外荧光,其核心价值在于:
卓越的多色兼容性:发射光谱与FITC、PE、PerCP等常用荧光素的发射峰高度分离,在多色流式或荧光成像实验中极大减少了光谱重叠(溢漏),确保SLAMF7信号的纯净度和定量准确性。
高亮度与光稳定性:亮度优于传统APC,且更耐光漂白,适用于长时间活细胞成像、高内涵筛选及对弱表达抗原的灵敏检测。
适用于深层成像:远红光受组织自发荧光干扰小,穿透力更强,有利于对组织切片或3D模型进行高质量成像。
设计理念
此探针是面向复杂免疫学多参数分析的专业化解决方案。SLAMF7胞外域是精确识别目标细胞"身份徽章"的"智能导引头";Alexa Fluor 647是搭载于独立、清晰"远红外通讯频道"的"加密信号发射器",确保在密集的"频谱环境"中信息无干扰传输;Fc Chimera则是兼容各类"外部设备"(不同二抗)的"多功能适配器",极大地拓展了应用场景。

 

二、核心机制:高保真检测与受体相互作用研究
该探针的核心功能在于实现SLAMF7的高特异性、高分辨率检测,并可用于研究其相互作用。
1. 特异性识别与高分辨率检测
精准标记SLAMF7阳性细胞:该探针可特异性结合表达SLAMF7的细胞,如多发性骨髓瘤细胞、浆细胞、活化NK细胞和CD8+ T细胞亚群。AF647的高信噪比使其能清晰区分阳性和阴性群体,即使是表达水平较低的细胞亚群。
流式细胞术多色分析的基石:在多色免疫分型中,AF647通道的洁净度使其成为理想选择。可以轻松地与标记在FITC、PE、BV421等通道的抗体联用,同时分析SLAMF7与其他表面标志物(如CD38、CD138、CD56、CD3、CD8)的共表达,实现细胞亚群的精细划分。
2. 可视化与空间定位分析
免疫荧光与共聚焦成像:用于检测细胞涂片、细胞爬片或组织冰冻切片中SLAMF7的亚细胞定位与表达模式。可研究SLAMF7在免疫突触处的聚集情况,或其在肿瘤微环境中的分布。
组织多重标记:在多重免疫组化实验中,AF647标记的探针是构建复杂免疫细胞图谱的关键组分,可同时观察SLAMF7+细胞与其他免疫细胞、肿瘤细胞的空间关系。
3. 受体相互作用与功能研究
结合动力学分析:利用其Fc部分,可将探针固定于生物传感器芯片,通过表面等离子共振技术,定量分析SLAMF7与自身或与其他蛋白的相互作用亲和力与动力学。
竞争与阻断实验:作为可溶性受体,可用于竞争性抑制细胞间的SLAMF7同型相互作用,或阻断治疗性抗体(如Elotuzumab)与靶点的结合,从而验证相关功能的分子基础。

 

三、下游应用:从免疫生物学到临床肿瘤学
该探针在基础免疫学、血液肿瘤诊疗及免疫治疗研发中具有广泛应用。
1. 多发性骨髓瘤的诊断与生物学研究
肿瘤细胞的鉴别诊断与分型:SLAMF7在绝大多数多发性骨髓瘤细胞上高表达,是区别于其他B细胞恶性肿瘤(如CLL、淋巴瘤)及反应性浆细胞增多的关键鉴别标志物。该探针是流式细胞术检测微小残留病的核心试剂之一。
研究SLAMF7的促肿瘤功能:探讨SLAMF7信号如何促进骨髓瘤细胞增殖、存活、与骨髓基质细胞的粘附及耐药。
2. 免疫细胞功能与分型研究
NK细胞功能研究:SLAMF7是NK细胞活化性受体。该探针可用于研究不同活化状态NK细胞上SLAMF7的表达动态,及其与细胞毒性功能、细胞因子产生的关联。
浆细胞与B细胞亚群分析:用于鉴别和分选不同分化阶段的浆细胞和特定B细胞亚群,研究其在自身免疫病和感染中的作用。
CD8+ T细胞分析:检测细胞毒性T细胞上SLAMF7的表达,研究其与T细胞耗竭、记忆分化和抗肿瘤功能的联系。
3. 靶向SLAMF7的免疫治疗研发与评估
Elotuzumab等抗体药物的作用机制研究:作为Elotuzumab(靶向SLAMF7的单抗)的模拟探针或竞争剂,用于研究该药物如何通过与SLAMF7结合,增强NK细胞介导的ADCC效应。
CAR-T/CAR-NK细胞治疗:
靶点验证:在开发SLAMF7靶向的CAR疗法前,准确评估患者肿瘤细胞及正常免疫细胞上SLAMF7的表达谱至关重要。
疗效监测与逃逸机制:治疗后监测SLAMF7抗原表达水平的变化,是评估CAR-T细胞压力选择下抗原逃逸的重要手段。
联合治疗策略探索:研究SLAMF7靶向药物与免疫检查点抑制剂、免疫调节剂等联合应用时,对免疫微环境的影响。

 

四、未来展望:整合前沿技术的精准免疫分析
作为先进工具,其发展将与免疫学研究的新范式紧密结合。
与超高维单细胞分析技术联用
质谱流式与光谱流式:开发基于相同结合域的金属标签抗体或直接用于光谱流式的抗体,实现与30-50个其他参数的同时无串扰检测,深度解析SLAMF7+细胞在肿瘤或组织中的高度异质性。
CITE-seq与蛋白质组学整合:结合单细胞测序,在单细胞水平关联SLAMF7蛋白表达与全转录组信息,精准定义功能细胞亚群。
空间多组学与微环境解析
作为关键标志物整合到CODEX、IMC或多重免疫荧光平台,在骨髓、淋巴组织或肿瘤组织中原位绘制SLAMF7+细胞的精确空间分布图,并分析其与邻近细胞的空间相互作用网络。
动态活细胞成像与功能筛选
利用AF647优异的光稳定性,进行延时活细胞成像,实时观察SLAMF7在免疫突触形成过程中的募集与分布动力学,或追踪CAR-T细胞与肿瘤细胞接触时SLAMF7的空间变化。
结合高内涵成像系统,高通量筛选调节SLAMF7表达或功能的化合物。
新型诊疗一体化探针开发
利用其Fc片段的灵活性,可开发同时偶联诊断性荧光分子和治疗性放射性核素的 "诊疗一体"探针,用于临床前模型中的靶向定位与治疗评估。
临床伴随诊断的标准化与自动化
推动基于该探针检测原理的标准化、自动化流式或数字病理分析流程,作为SLAMF7靶向药物临床试验分层的伴随诊断工具,并最终应用于临床实践。

 

总结
Alexa Fluor 647-Labeled SLAMF7 Fc Chimera是连接基础免疫学发现与临床免疫治疗转化的一座精密桥梁。它将一个在淋巴细胞通讯与肿瘤生物学中至关重要的受体,转化为一个能在最复杂多色分析系统中被清晰、独立解读的高性能信号。从解析NK细胞杀伤的分子开关,到精准诊断与监测多发性骨髓瘤;从深入探索Elotuzumab的起效机制,到赋能下一代SLAMF7-CAR疗法的开发与优化,这个"多光谱精准探针"始终是免疫学家和肿瘤学家手中不可或缺的核心工具。未来,随着单细胞空间组学、活体动态成像和人工智能分析的进步,以此探针为代表的高性能蛋白工具将推动我们以系统化、动态化和定量化的全新视角,更深刻地理解免疫识别与肿瘤免疫编辑的奥秘,并加速更有效、更精准的免疫治疗策略的问世。

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