小鼠胃类器官完全培养基制备：将基础培养基、细胞因子（1-6）及各类添加物按既定比例混合，配制成完全培养基。
1、原代
（1）在超净台里快速剖开小鼠腹腔，取出胃组织，置于预冷PBS（加青霉素、链霉素、原代抗生素）中，剪开胃，冲洗内容物，剥离外层脂肪和血管。
（2）将清洗后的组织块收集到1.5ml EP管中，使用无菌尖头眼科手术剪将组织块尽量剪碎(匀浆状）。组织剪切程度与消化时间相关，剪切程度越高则消化时间越短，将剪碎后的组织转移至15ml无菌离心管中。
（3）加10倍体积的组织消化液消化，37℃震荡10-30min，消化过程中随时观察情况，当视野中观察到有大量细胞漏出，且大部分细胞呈细胞团块时，可终止消化（注：不要消化到单细胞状态）。
（4）在确认消化完成的组织悬液中，加入胎牛血清（FBS）至终浓度达2-5%或终浓度为0.1%的BSA后吹打混匀。
（5）将组织与细胞悬液过70µm细胞滤网，将过滤后的细胞悬液1000rpm，离心5min，离心后去上清。
（6）若离心后沉淀中观察到明显的红色沉淀（红细胞），加入2ml红细胞裂解液，吹打混匀后放置3min。加10ml PBS重悬终止裂红， 1000rpm 离心5min后，弃上清。
（7）适量基础培养基或PBS重悬沉淀。
（8）以合适的比例混合基质胶和隐窝，24孔细胞培养板为例，每孔点胶25-30ul基质胶混合物进行铺板（4℃下操作）。
（9）将铺好的培养板放入37℃培养箱中20-30min成胶，添加适量小鼠胃类器官完全培养基（恢复室温）进行培养。
2、类器官传代培养
（1）移液枪吸去培养基，每孔添加1-2ml 4℃ PBS，放置2min。
（2）移液枪轻柔吹打基质胶，收集在15ml离心管中，PBS定容到10-14ml ，4℃静置20-30min，每3-5孔为一组。1000rpm离心5min弃去液体，保留沉淀。
（3）添加适量基质胶重悬类器官，每孔25-30ul基质胶铺在24孔细胞培养板中，放置培养箱中20-30min成胶，添加适量小鼠胃类器官完全培养基。
3、类器官冻存
（1）移液枪吸去培养基，每孔添加1-2ml 4℃ PBS，放置2min。
（2）移液枪轻柔吹打基质胶，收集在15ml离心管中，PBS定容到10-14ml ，4℃静置20-30min，每3-5孔为一组。1000rpm离心5min弃去液体，保留沉淀。
（3）添加适量类器官冻存液，轻柔吹打重悬，以24孔细胞培养板为例，密度为2-3个孔冻存1管，每管体积1ml。
（4）做好标记信息，进行程序降温后，移入液氮长期保存。
4、类器官复苏
（1）取10ml DMEM/F12基础培养基于15ml离心管中。
（2）从液氮罐中取出冻存的类器官，快速置于 37℃水浴锅中融解。
（3）水浴融解过程中，需轻轻摇动冷冻管，以确保冻存液在 1-2min内完全融解。
（4）将溶解后的类器官快速转移至15ml 离心管，使用移液器轻轻吹打6-8次，1000rpm离心 5min，然后除去上清液并收集类器官沉淀。
（5）基质胶重悬，每孔25-30ul基质胶铺在24孔细胞培养板中，放置培养箱中20-30min成胶，添加适量小鼠胃类器官完全培养基。
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