细胞凋亡又称程序性细胞死亡，是细胞为适应生存环境而主动发生的死亡过程。在细胞凋亡早期，虽然细胞的完整性得以保留，但其表面结构已经开始发生改变。其中最为重要的变化之一是磷脂酰丝氨酸从细胞膜内侧翻转至细胞膜外侧。在凋亡晚期或细胞坏死阶段，细胞膜失去完整性，允许染料进入细胞内。在细胞凋亡过程中，除了细胞膜发生改变外，细胞质和细胞核也会出现一系列形态学变化。细胞体积缩小，但细胞质中的细胞器形态始终保持完整。细胞核内染色质结构发生改变，包括染色质固缩、染色质边缘化、细胞核内胞浆紧实、核膜折叠等，最终细胞形成凋亡小体。这些形态学特征为细胞凋亡的检测提供了多种切入点。
Annexin V是一种分子量为35至36千道尔顿的钙离子依赖性磷脂结合蛋白，其对磷脂酰丝氨酸具有很高的亲和力。磷脂酰丝氨酸正常情况下位于细胞膜的内侧，在细胞凋亡早期翻转至细胞膜外侧。因此，Annexin V可选择性地与凋亡早期细胞结合。通过将Annexin V与荧光素FITC偶联，并引入His标签以便于纯化和检测，可获得FITC标记的Annexin V His标签蛋白。该标记蛋白在钙离子存在下可与凋亡细胞表面的磷脂酰丝氨酸特异性结合，通过流式细胞术可对凋亡细胞进行定量检测。FITC的绿色荧光信号可在流式细胞仪的FL1通道被检测到，实现对凋亡早期细胞的识别和计数。
在细胞凋亡检测中，常将Annexin V与细胞死活染料联合使用，以区分正常细胞、早期凋亡细胞、晚期凋亡细胞和坏死细胞。常用的细胞死活染料包括碘化丙啶和7-氨基放线菌素D。这些染料不能穿透具有完整细胞膜的细胞，但可以穿透凋亡晚期细胞或坏死细胞的破损细胞膜，进入细胞内与核DNA结合，发出红色荧光。将FITC标记的Annexin V His标签蛋白与死活染料联合使用时，Annexin V检测细胞膜外侧的磷脂酰丝氨酸，死活染料检测细胞膜的完整性。通过流式细胞术分析，可根据两种荧光信号的阴阳性将细胞分为不同的群体。
在流式细胞术分析中，以Annexin V荧光强度为横坐标，以死活染料荧光强度为纵坐标，绘制散点图。正常细胞为Annexin V阴性和死活染料阴性，位于左下象限。早期凋亡细胞为Annexin V阳性和死活染料阴性，位于右下象限。晚期凋亡细胞为Annexin V阳性和死活染料阳性，位于右上象限。坏死细胞为Annexin V阴性和死活染料阳性，位于左上象限。左上象限的细胞可能包含已经失去细胞膜的细胞碎片或由于凋亡以外的原因导致的细胞死亡，通常不纳入凋亡分析的统计范围。通过这种分析方法，可以准确区分不同状态的细胞群体，计算凋亡细胞的比例。
细胞凋亡过程中，细胞的物理特性发生变化，这些变化会影响流式细胞术的光散射信号。前向角散射光与细胞大小相关，侧向角散射光与细胞颗粒度和复杂度相关。在凋亡早期，细胞发生皱缩，细胞体积减小，导致前向角散射光信号降低。侧向角散射光信号可能因染色质固缩等变化而增强或改变。因此，在流式细胞术分析中，门控策略的选择对凋亡检测的准确性至关重要。在FSC与SSC散点图中，应将靠近左侧的低前向角散射光区域圈入分析，以避免凋亡信号的丢失。如果只圈定正常细胞大小的区域，可能会遗漏部分凋亡细胞，导致实验结果出现偏差。
使用FITC标记的Annexin V His标签蛋白检测细胞凋亡时，需要注意以下几点。钙离子是Annexin V与磷脂酰丝氨酸结合的必需条件，检测缓冲液中应含有适宜浓度的钙离子。细胞处理过程中应避免过度机械力，以免造成人为的细胞膜损伤。染色时间和温度应保持一致，以保证实验结果的重复性。样品应在染色后尽快上机检测，避免长时间放置导致凋亡细胞比例增加。对于贴壁细胞，消化过程应尽量温和，避免胰酶过度消化影响细胞膜完整性。此外，应设置合适的对照，包括未染色对照、单染对照和阳性对照，用于确定阴阳性细胞群的边界。
南京优爱生物科技有限公司（UA-Bio）自主研发的 "FITC-Labeled Annexin V His Tag Protein, Human"（货号：UA011315），是专为细胞凋亡流式检测与成像分析而打造的高性能荧光标记试剂。该蛋白为人源Annexin V，带His标签并经FITC荧光标记，能够高效结合凋亡细胞外翻的磷脂酰丝氨酸（PS），为您在细胞凋亡流式定量检测、活细胞成像及药物筛选等领域，提供稳定、可靠的标准化工具。
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